蛋白表達FAQ
原核表達系統蛋白表達問題解析
一、外源 DNA 片段成功插到載體里面（PCR 鑒定），但無法表達蛋白
一般判斷目的基因是否表達，首先要進行 SDS-PAGE 檢測。跑膠的時候一定要設對照：Marker，標準品陽性對照， 以及空白載體（誘導）和重組載體（不誘導）2 個陰性對照，再加上誘導不同時間的表達結果。跑 SDS-PAGE 的話可以用考馬斯亮蘭染，它靈敏度在 100ng 左右；但是不能跟著做 western blot 了。銀染的靈敏度在 0.1～1 ng； 或是 Sypro Red，靈敏度高還可以繼續做 Western blot。
在做過 Western Blot 仍沒有檢測到表達帶，那么就要先判斷載體的多克隆位點和片斷插入的序列，是否有因為酶切連接而意外引入了轉錄終止信號。其次要對測序結果進行確定，確定插入的每個堿基都是正確的，沒有意外終止 的情況。最后，也需要注意基因中是否有稀有密碼子，可更換表達菌株。
每種菌株都有自己獨特的設計，或者是蛋白酶缺陷，或者是重組酶缺陷，改造的目的都是為了讓質粒在細菌中存在更穩定，表達的產物不易被降解。不同的載體要配合一定的菌株使用，像 pET 系列就一定需要有 T7 RNA 聚合酶片段整合在細菌中的菌株才可用于表達。采用不同調控機制會使用不同的表達菌株，所以換菌株一定要仔細看過載體的調控方式再換。例如，使用 BL21（DE3）菌株表達不成功可以嘗試用 Rosetta 系列菌株表達，它能夠由一種氯霉素抗性的、與 pET 相容的質粒提供 AUA，AGG，AGA，CUA，CCC 和 GGA 的 tRNA。所以這類菌株能夠明顯改善大腸桿菌中由于稀有密碼子造成的表達限制。有時不明原因的表達蛋白截短（比預期的分子量要小很多） 也可能是由于稀有密碼子造成的。
沒有發現原則性錯誤之后，可以從表達條件入手，梯度條件改變表達溫度、IPTG 濃度，低溫、較長時間的表達有利于蛋白穩定、融合表達；低濃度的 IPTG 可以減少化學物質對細胞的損傷。而且培養基中的葡萄糖可能會抑制表達。導致表達的蛋白與預期的不同。如果嘗試改變條件后依然沒有表達，可以試試換不同的培養基（如 LB、TB、M9 等）。
如果以上方法均無法表達出目的蛋白，可更換載體-表達系統。在換過不同載體，不同菌株之后仍是表達不出來的 話，可以嘗試其它的表達系統，因為有些蛋白是在大腸桿菌表達系統中無法表達。
二、蛋白表達出來了，但是跑 SDS-PAGE 時大小不符?
SDS-PAGE 時蛋白的凈電荷會影響遷移率。帶電量高的蛋白會結合較少的 SDS，阻礙蛋白的泳動。富含脯氨酸的蛋白會在 SDS-PAGE 膠中移動得特別慢。如果蛋白的等電點在 5~9 之間，并且組成的氨基酸組分沒有明顯的偏好， 那么目的蛋白遷移率與預期相差較遠就很有可能不是由于凝膠電泳造成的，可能是稀有密碼子造成表達產物的截
短。利用 C 端或者 N 端的標簽進行 Western Blot，看是否由于蛋白被蛋白酶降解而導致多條目的條帶或者比預期小很多的條帶出現。
三、重組表達的蛋白為不可溶包涵體
大多數在大腸桿菌中表達的外源蛋白都是以包涵體形式存在。一般情況下，形成包涵體表達產率都很高，并且容易分離，得到比較純的包含體。包涵體致密的結構有助于防止蛋白酶對它的降解作用，如果毒性較強的蛋白形成包涵體也就不會對細胞產生太大的損傷。如果表達蛋白的目的是為了作為抗原制備抗體，那么可以用 PBS 將包涵體懸浮， 使用佐劑將溶液乳化后注射進入動物體內進行免疫。
包含體的形成據分析原因之一在于表達量過高，表達產物來不及折疊為活性形式——多數以高表達見長的表達系統 都會得到包含體產物。如果融合表達含有標簽，常用的做法是將包涵體用尿素溶解后在變性的情況下進行純化，然 后復性。
四、如何獲取可溶性蛋白
如果需要獲得具有一定活性的表達蛋白，那么最好讓蛋白可溶形式表達，避免包涵體形成。避免包涵體的方法很多， 比如：選用表達量不高的表達系統，選擇有助于可溶性表達的融合表達系統比如 pThio，pMal 等等，對于 T7 系統來說降低或者減少誘導條件（例如降低 ITPG 濃度減少 T7 聚合酶）從而降低表達速度，使用基本培養基等也有助于可溶性表達。另外一個容易忽視的問題是大腸桿菌內還原性過高會導致二硫鍵不能正確形成，同樣容易導致表達產物不溶，更換菌株例如 Novagen 的 Origami 系列也有助于解決這個問題。還有一種方法是當蛋白掛在柱子上的時候，在還原和氧化的谷胱甘肽存在的情況下用濃度從 6M 到 0M 的鹽酸胍過柱，促使蛋白的折疊。在蛋白重新折疊后用咪唑洗脫。德泰的上清蛋白表達服務通過條件矩陣正交優化的方法，使重組蛋白表達在上清液中，即獲得具有相當活性的表達蛋白
五、切除標簽時引入的蛋白酶是否一定要切除?
很多時候我們要用蛋白酶除去加入的標簽，在蛋白酶切除標簽后是否一定要去除呢?有人認為蛋白酶與目的蛋白加入的比例是 1:500 甚至更低，蛋白酶是不會影響到下一步操作的，在一些粗放的生化實驗不用去處蛋白酶。嚴謹的后繼實驗需要將蛋白酶除去。很多公司已經開發出帶有標簽的蛋白酶，使得僅通過過親和柱就可以方便的去除蛋白 酶和融合標簽。Tag-Free 技術與傳統的標簽切除技術不同，不存在蛋白酶引入導致雜蛋白影響的情況，具體對比如下：
對蛋白影響 | 標 簽 蛋白 | 無標簽蛋白 |
對蛋白結構功能影響
| 較長的標簽有可能限制重組蛋白折疊，影響蛋白的結構和生物學功能 | 無標簽蛋白氨基酸序列與天然蛋白氨基酸序列基本相同，更接近天然蛋白的結構 |
免疫原性 | 較易產生非特異性抗體，影響抗體制備 | 保持蛋白抗原的天然結構 |
蛋白結晶與X 射線結構解析
| 額外的標簽氨基酸可能造成晶體結構改變，影響 功能結構分析 | 無額外的標簽氨基酸，更接近天然蛋白的構象，更易結晶 |
FDA 藥檢審批
| 通常因含有額外引入的氨基酸，與天然蛋白序列 存在差異，不易通過審核 | 與天然蛋白序列一致，易通過審核
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