酵母蛋白表達步驟/實驗流程

本文主要講述了酵母蛋白表達步驟，詳細酵母表達流程。從感受態細胞制備，轉化方法選擇及操作，從化學試劑PEG1000 轉化，電擊轉化，原生質體法轉化三個方法入手及轉化子的篩選及最終的蛋白表達，全套酵母蛋白表達標準操作流程。

質粒線性化

在酵母表達系統中已經介紹了酵母蛋白表達原理，因此線性化是酵母轉化的第一步，采用不同的限制酶酶切可以得到不同的表型。

轉化方法

畢赤酵母PEG1000 轉化及感受態制備

配置緩沖液

1）緩沖液 A：1.0M 山梨醇，10mM 甘氨酸，pH8.35，3%（v/v）乙二醇，濾膜過濾，-20℃保存；

2）緩沖液 B：40%（w/v）PEG1000，0.2M 甘氨酸，pH8.35，濾膜過濾，-20℃保存；

3）緩沖液 C：0.15M NaCl，10mM 甘氨酸，pH8.35，濾膜過濾，-20℃保存；

4）未污染的新鮮、試劑級 DMSO，-70℃保存

將 DNA 直接加在凍結的酵母細胞上是本實驗的關鍵之處（即使在冰上解凍的待轉化細胞，其攝取外源 DNA 的能力也在解凍過程中迅速下降；樣品的轉化，進行多組試驗。

感受態制備
 

1）接種酵母受體菌單菌落于 YPD 平板（YPD：蛋白表達試劑配置），30℃培養 2 天；

2）挑取平板上的單菌落接種于 10mlYPD 液體培養基中，30℃搖床震蕩過夜；

3）過夜培養后按 1%左右的接種量接種到 100mlYPD 培養基中震蕩培養至 OD 值從 0.1 至 0.5~0.8；

4）3000~5000rpm 離心收集沉淀菌體，用 50ml 預冷 A 液洗滌，并重懸與 4mlA 液中；

5）根據每次使用量（0.1-0.2ml 左右）分裝與 1.5ml 離心管中，每管加入 10ul 的預冷 DMSO，混合后迅速-80℃/液氮（感受態可以放到-80℃ ，但是酵母表達建議感受態現做現用）

酵母轉化

1）線性化質粒 50ug（可預冷）溶于 200ul 的 TE 中，直接加入凍存的酵母感受態中；

2）37℃水浴 5min，過程混合樣品 2 次；

3）取出加入 1.5ml 緩沖液 B，徹底混勻；

4）30℃水浴 1 小時；

5）室溫 2000rpm 離心 10min，去上清，得沉淀，重懸菌體與 1.5ml 緩沖液 C 中；

6）再次離心，去上清，得沉淀，輕輕加入 0.2ml 緩沖液 C 重懸；

7）將重懸的轉化液涂與選擇性培養基（根據抗性配置）中，30℃孵育 3-4 天，進行鑒定。

畢赤酵母電擊感受態細胞制備及轉化

感受態制備

1）接種酵母受體菌單菌落于 YPD 平板，30℃培養 2 天；

2）挑取平板上的單菌落接種于 10mlYPD 液體培養基中，30℃搖床震蕩過夜；

3）過夜培養后按 1%左右的接種量接種到 100mlYPD 培養基中震蕩培養至 OD 值 1.2~1.5；

4）4℃，5000rpm 離心 5min 收集沉淀菌體，用 100ml 預冷無菌水重懸菌體；

5）4℃，5000rpm 離心 10min 收集沉淀菌體，用 100ml 預冷無菌水重懸菌體；

6）再次 4℃，5000rpm 離心 10min 收集沉淀菌體，用 100ml 預冷無菌水重懸菌體；

7）20ml，1mol/L 山梨醇洗滌 1 次；

8）將菌體溶于 200ul，1mol/L 預冷山梨醇中，不加甘油，-80℃放置幾小時，待轉化

酵母電轉

1）準備好 80ul 的酵母感受態與線性化的質粒 1-5ug（冰上預冷 15min）混合，迅速放入 0.2cm 的電擊杯中（電擊杯冰上預冷滅菌），電擊；

2）電擊結束，迅速加入 1ml 山梨醇，涂平板（在搖床上培養 1h 后涂平板也可）；

3）MD 培養基生長 3-4 天，ROB 培養基上生長 4-5 天后，鑒定。

電擊注意點

1）線性化質粒的含量在 1-5ug，純度越高越好，量要有保證，很多人找不到陽性轉化子可以考慮是否是這個因素造成；

2）感受態菌液收集，確定 OD 值在 1.2-1.5 之間，可以稀釋不同倍數，判斷是否是線性關系，菌液渾濁單 OD 值不高，可能是OD 稀釋倍數不夠；

3）感受態保存，感受態制備但其他還沒處理好，冰上放置的時間對轉化效率也會有影響，因此還是那個原則：現做現用；且分裝成每次夠用的量，一旦拿出就不在放回，也避免每次吸取造成污染；                                       

4）電擊杯清洗，先洗凈吹干，浸泡在 75%乙醇中，使用前超凈臺紫外滅菌，重復使用對實驗也會有一定影響；

5）電擊參數，電壓及電擊時間可以摸索，適當增加電壓或延長電擊時間，電擊過程冰上操作

畢赤酵母原生質體法轉化及感受態制備

原生質轉化原理

酵母細胞具有細胞壁，細胞壁會組織其對外源 DNA 的攝入，因此，去除掉部分的細胞壁有利于酵母細胞對 DNA 的吸收。利用藤黃節桿菌酶（為一種葡聚糖酶），可以部分消化細胞壁。關鍵在于不能過度的消化細胞壁，否則將造成細胞死亡。藤黃節桿菌酶的消化能力受到 SDS 的影響，可以加入 SDS 對其消化進行控制，以得到消化適度的細胞。消化獲得 70%的原生質細胞時，效果最好。

試劑配制

轉化當天，配制如下溶液：

① SE：1M 山梨醇，25mM EDTA，pH8.0

② SCE：SE：1M 山梨醇，1mM EDTA，10mM 檸檬酸鈉緩沖液，pH8.5

③ SOS：1M 山梨醇，0.3xYPD，10mM CaCl₂

④ CaS：1M 山梨醇，10mM Tris-HCl，pH7.5，10mM CaCl₂

⑤ DTT，PEG：DTT 水配制為 1M 濃度，PEG 用水配制 40%（w/v）

⑥ CaT：20mM Tris pH7.5，20mM CaCl₂

⑦ 藤黃節桿菌酶：用水配制成 3mg/ml 的濃度

⑧ 5%SDS 溶液，RD 融化瓊脂 100ml，1M 山梨

醇每次轉化時配制

① SED：19ml LSE 加 1ml DTT

② PEG/Cat：1:1 混合 40%PEG 及Cat 其他試劑

① YPD 培養基 1L，YPD 平板 1L

② RDB 平板 1L，RDHB 平板 1L
 

感受態制備及消化細胞壁

1）接種酵母受體菌單菌落于 YPD 平板，30℃培養 2 天；

2）挑取平板上的單菌落接種于 10mlYPD 液體培養基中，30℃搖床震蕩過夜；

3）取培養的細胞 5ul，10ul，20ul 分別加入到含有 200mlLYPD 的液體培養基中，30℃震蕩過夜（300rpm）；

4）第二天測每個培養瓶中的 OD600 值，并取出事先配置好的轉化溶液，室溫放置：

5）收集 OD600 值在 0.2-0.3 對應的培養瓶中的細胞，室溫離心（1500rpm5min 左右），得到沉淀；如果沒有培養瓶中的 OD 值在 0.3 左右的話，選擇一個培養瓶，用新配置的培養基以 1：4 稀釋，再次培養（2-3h 左右），直至出現OD 值為 0.2-0.3，收集細胞；

6）準備去除細胞壁，準備去壁試劑和待去壁的細胞；

7）準備去壁試劑：現配 SED，保證DTT（分析級）的新鮮度，配完放-20℃；

8）準備帶去壁細胞：先用滅菌水清洗，轉入離心管；1500rpm 離心 5min，收集細胞，用 20mlSED 重懸并洗滌離心；再次用 1M 山梨醇洗滌，離心（同上）；用SCE 重懸，分開至兩個離心管中（每管 10ml 左右）；

9）準備藤黃節桿菌酶，取一管酶放置冰上，以上準備的兩管細胞取出一管加入藤黃節桿菌酶，開始消化細胞（這一步可確定酶消化的最佳時間）；

最佳時間的確定

① 準備 20ml 5%SDS 溶液分光光度計調至 800nm，空白對照為 800ul 5% SDS 及 200ul SCE；

② 準備 10 個離心管，編號為 0，2，4，5，6，7，8，9，10，15，20，25，30，40，45，50（根據時間編號）；

③ 取上述 8 步中的另一管細胞，取出 200ul 加入至 0 號管中，放置冰上，此為 0 點；

④ 加入 7.5ul 藤黃節桿菌酶在剩余的細胞中，輕混，30℃孵育（不要晃動）用來建立最佳時間所用

⑤ 2min 時取 200ul 懸浮液至 2 號管中，同理 4，5，6，7，8min 時重復操作，讀樣品 OD800 值；

⑥  用公式計算細胞去壁的效率：%去壁率=100-{（T  時間  OD800-0  時間  OD800  值）x100} 10）

10）計算出去壁率為 70%左右時，得出最佳消化時間，同樣操作加入 7.5ul 消化酶于另一管中消化細胞
11）室溫離心去除懸浮液，1M 山梨醇洗滌一次，0.6mlCaS 懸浮細胞，立即轉化，去壁的細胞應立即轉化。

轉化畢赤酵母

1）取 100ul 將去壁細胞，放入 1.5ml 離心管中（滅菌）；

2）準備 10ug 線性化質粒（預冷）與去壁細胞混合，加入 1ml 新鮮 PEG/Cat 溶液，輕混，室溫孵育 10min；

3）室溫 750rpm 離心 10min，去除 PEG/Cat 溶液；并用 150ulSOS 培養基懸浮轉化細胞，室溫孵育 20min；

4）加入 800ul 1M 山梨醇，涂平板；

5）取 200ul 轉化細胞和 RD（液體）混勻倒于 RDB 平板上，凝固后導致平板，30℃培養 4-6 天，出現轉化子；

6）取 100ul 稀釋細胞，與 RDH（液體）混勻，涂在 RDHB 上，凝固后倒置生長，30℃培養 4-6 天，出現克隆， 表明去壁細胞可再次生長為分裂細胞。

陽性轉化子的篩選與蛋白表達

Mut+和 Muts 表型的判斷
待轉化子在平板上生長一段時間后，進行 Mut+和 Muts 的篩選。挑取單克隆，在 MM 及 MD 培養基上劃線或點（先在MM 平板上點，再在 MD 平板上點，一個克隆換一次牙簽），30℃培養 2 天。觀察，在MD 培養基上生長而在MM 培養基上不生長或長的很小即為 Muts 表型，其余為 Mut+表型。

Mut+的誘導表達

1）挑取單菌落，搖菌，在 25mlMGY 或 BMG 或 BMGY 培養基中，30℃，300rpm 培養至 OD600 為 2-6（培養15-18h 左右觀察）；

2）室溫 2000rpm 離心 5min，收集菌體，用上述培養基重懸，使 OD600 為 1.0 左右；將菌液至于 1L 搖瓶中，30℃300rpm 培養，每 24 小時加入 100%甲醇，至終濃度為 0.5-1.0%；

3）根據時間點取樣（1ml）至于 1.5ml 離心管中，離心收集上清和菌體，分析蛋白表達量和最佳收獲時間；

4）可以用 SDS-PAGE 和Western blot 進行分析鑒定表達情況。
 

Muts 的誘導表達

1）挑取單菌落，搖菌，在 25mlMGY 或 BMG 或 BMGY 培養基中，30℃，300rpm 培養至 OD600 為 2-6（培養15-18h 左右觀察）；

2）室溫 2000rpm 離心 5min，收集菌體，用上述培養基重懸，使 OD600 為 1.0 左右；將菌液至于 1L 搖瓶中，30℃300rpm 培養，每 24 小時加入 100%甲醇，至終濃度為 0.5-1.0%；

3）根據時間點取樣（1ml）至于 1.5ml 離心管中，離心收集上清和菌體，分析蛋白表達量和最佳收獲時間；

4）可以用 SDS-PAGE 和Western blot 進行分析鑒定表達情況。