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蛋白表達資料

原核蛋白表達

大腸桿菌表達系統

 

大腸桿菌蛋白表達原理

誘導原理:Lac 阻遏物是一種具有 4 個相同亞基的四級結構蛋白,都有一個與誘導劑結合的位點。在沒有乳糖存在時,lac 操縱子(元)處于阻遏狀態,Lac 阻遏物能與操縱基因 O 結合,阻礙 RNA 聚合酶與 P 序列結合,抑制轉錄起動。而當有誘導劑與阻遏蛋白結合后,其蛋白構象就發生變化,導致阻遏物從操縱基因 O 上解離下來,RNA 聚合酶不再受阻礙,發生轉錄。
 

大腸桿菌表達系統步驟

不包括基因構建等上游操作和蛋白純化部分?;驑嫿▍⒖济艽a子優化,蛋白純化參考蛋白純化專題。以下內容主      要包括蛋白表達鑒定:

1.表達鑒定第一天的任務,常用抗性選擇根據感受態細胞選擇

  • 拿到質粒,離心(3000r/min;2min)

  • 在質粒中加入 TE(使質粒最終加入到 110μL 感受態細胞中的量為 80-100ng,據此確定加入 TE 的量

  • 一般為(1μg 質粒加 20μLTE;2μg 質粒加 50μLTE;5μg 質粒加 100μL TE)

  • 將質粒與 TE 混勻,加入 2μL 混液于感受態細胞中

  • 將感受態細胞放入冰箱(4℃)中,30min

  • 取出后立即放入水浴鍋中(42℃),熱激 90s,

  • 再次放入冰箱(4℃)中,3min

  • 拿出后取 200μL 的 LB 液體培養基加入到已轉入質粒的感受態細胞中

  • 放入搖床(37℃; 195r) 中, 30nim 至 60min; 最佳 45min)

  • 取出離心(3000r/min;2min)

  • 去掉 200μL 的上清,留 100μL 左右上清懸浮沉淀,吸取 50μL 懸液涂平板,先將對應抗性的平板放入培養箱(37℃)中預熱 20min)

  • 把平板放入培養箱(37℃),過夜(12h 至 16h)

2.表達鑒定第二天的任務,注意 Pcold 的表達溫度

  • 每個平板挑取單菌落至 4 支對應抗性的 LB(4ml)試管中,編號為“0”“1”“2”“3”

  • 將試管放入搖床(37℃;195r) 中,單抗 3h 左右;雙抗 4 左右;剛開始用可見分光光度計測 OD 值; 熟練后可目測(背光下,以試管中的槍頭為例,剛剛看不見槍頭即可)),測 OD 值(0.6 至 0.8)

  • 從“0”號管中取 700μL 懸液加入到 100μL(C=80%)的保種甘油中,震勻,放入冰箱(-20℃)凍存

  • 在每組菌的“1”“2”“3”號試管中分別加入 2μL 的 IPTG(終濃度 0.5mM 最適

  • 視不同的載體選擇適合的表達環境(PET/PGEX:15℃表達過夜;25℃表達 6h;37℃表達 3h 至 4h(4 支試管,“0”“1”號試管 15℃表達過夜;“2”“3”試管 37℃表達 3h 至 4h)。Pcold:全部 15℃表達過夜)

3.表達鑒定第三天,全菌的表達鑒定分析,注意控制溶質的量及溶液黏度

  • 從每組 4 支的試管中均取 500μL 菌液加入到 1.5ml 離心管中,若 OD 值不一樣,值小的可多取離心

  • (6000r/min),5min, 去上清,留沉淀(沉淀少的,可再取菌液離心,盡量使沉淀量接近)

  • 在每個離心管中加入 500μL 的 DDH2O,懸浮沉淀,離心(6000r/min),5min, 去上清,留沉淀

  • 在每支離心管中加入 45μL 的 1×PBS 和 45μL 的 2×Loading Buffer 懸浮沉淀(當溶質適量且均一的情況下,加入量不變;當溶質多且粘稠時,應使加入量增大,為降低粘度也可減少上液量)

  • 放入煮樣器(100℃) 25min

  • 取出后離心(6000r/min) 3min, 電泳檢測。

 

大腸桿菌表達系統

  • 質粒載體:小型環狀 DNA,能自我復制。一個完整的質粒載體必須要有復制起點、啟動子、插入的目的基因、篩選標記以及終止子;此外對大腸桿菌表達載體的要求是:①操縱子以及相應的的調控序列,外源基因產物可能會對大腸桿菌有毒害作用;②SD 序列,即核糖體識別序列,一般 SD 序列與起始密碼子之間間隔 7-13bp 翻譯效率最高;③多克隆位點以便目的基因插入到適合位置。

  • 目的基因:在大腸桿菌表達體系中要表達的基因即外源基因,包括原核基因和真核基因;原核基因可以在大腸桿菌中直接表達出來,但是真核基因韓有內含子不能,大腸桿菌不能對 mRNA 進行剪切,從而形成成熟的 mRNA,所以真核基因一般以 cDNA 的形式在大腸桿菌表達系統中表達。此外還需提供大腸桿菌能識別的且能轉錄翻譯真核基因的元件。

  • 表達宿主菌:表達蛋白的生物體即大腸桿菌。表達宿主菌的選擇在大腸桿菌蛋白表達過程中是很重要的因素——多數人會直接選擇實驗室曾經用過的宿主菌,而不去追究原因。對于宿主菌的選擇主要根據宿主菌各自的特征及目的蛋白的特性,例如目的蛋白需要形成二硫鍵,可以選擇 Origami 2 系列,Origami 能顯著提高細胞質中二硫鍵形成幾率,促進蛋白可溶性及活性表達;目的蛋白含有較多稀有密碼子可用Rosetta 2 系列,補充大腸桿菌缺乏的七種(AUA,AGG,AGA,CUA,CCC,GGA 及 CGG)稀有密碼子對應的 tRNA,提高外源基因的表達水平。

  •  

    大腸桿菌表達現象

    可能原因

    建議宿主

    無蛋白表達或出現截短蛋白

    密碼子偏移性

    Rosetta 2

    Rosetta gami 2

    Rosetta gami B
    RosettaBlue

    pLysS 菌株

    rigami 2

    Rosetta gami 2Rosetta gami B
    pLysS、pLysE 菌株

    細胞死亡,生長極困難

    基因產物為毒性蛋白

    蛋白無活性

    蛋白錯誤折疊



    無克隆生長



    過高本底表達

    • 大腸桿菌表達系統種類

    • T7 大腸桿菌表達系統

    以 T7 啟動子、T7RNA 聚合酶等 T7 噬箘體轉錄體系的元件為核心構建的表達系統。T7 RNA 聚合酶一種高活性的RNA 聚合酶,mRNA 的合成速度比大腸桿菌內的 RNA 聚合酶快 5 倍,并某些不能被大腸桿菌 RNA 聚合酶轉錄的序列也可以轉錄,所以 T7 RNA 聚合酶和 T7 噬箘體啟動子的存在的情況下,大腸桿菌本身的轉錄競爭不過 T7 噬箘體轉錄體系,最終受 T7 噬箘體啟動子控制基因的轉錄。

    •  

    • Lac 和 Tac 大腸桿菌表達系統

    它是以大腸桿菌 lac 操縱子調控機理為基礎設計、構建的大腸桿菌表達系統,具有多順反子結構,結構排列為:

    •  

    • 啟動子(lacP)- 操縱基因(lacO) - 結構基因(lacZ-lacY-lacA)
      原理:在無誘導物的情況下,負調節因子 lacI 基因產物形成四聚體阻遏蛋白與啟動子下游的操縱基因緊密結合,阻止轉錄的起始。加入誘導劑后,IPTG 與 lacI 基因產物結合,使操縱基因解離出來,lac 操縱子的轉錄因此被激活。用 tac 啟動子構建的表達系統稱為 Tac 表達系統。
       

    • PL 和 PR 大腸桿菌表達系統

    以啟動子 PL、PR 為核心構建的表達系統。PL 和 PR 表達系統具有很強的啟動轉錄能力,誘導時不需要加入化學誘導劑,成本低廉,但在熱刺激過程中,大腸桿菌中的一些蛋白水解酶會被激活,降解所表達的外源蛋白;其次是在      大規模發酵培養菌體時,通過熱平衡交換方式提高溫度,需要較長的時間,這會降低誘導效果,從而對重組蛋白的表達量有影響。


    此外還有其他表達系統,如 pH 調控型、營養調控型、糖原調控型等。

    大腸桿菌表達系統比較

    種類

    優點

    缺點

    T7 大腸桿菌表達系統

    目的基因的表達水平高

    較高的本底表達
    對表達和制備用于醫療的重組蛋白不適合

    對表達和制備用于醫療的重組蛋白不適合
    可能降解所表達的重組蛋白,不適合大規模培養

    Lac 表達系統

    易于調控和操作

    Tac 表達系統

    易于調控,轉錄水平高于 lac

    PL  PR 表達系統

    不需要加入化學誘導劑,成本又低廉,轉錄能力強

    大腸桿菌與其他表達系統比較

    種類

    優點

    缺點

    大腸桿菌表達系統

    大腸桿菌表達系統具有表達背景清楚,表達水平高, 操作簡單,培養周期短,抗污染能力強

    表達真核基因只能用其 cDNA,不能進行翻譯后的修飾加工,含有大量內毒素

    哺乳動物表達系統

     

    可以使蛋白正確折疊,提供復雜的 N 型糖基化和準確的 O 型糖基化等加工修飾,更接近于天然蛋白

    產率低,某些糖基化產物不穩定、不易純化,費用昂貴

     

    酵母表達系統

    使用簡單,表達量高,可大規模生產,與原核相比 可對異源蛋白修飾

    酵母表達蛋白有時會出現蛋白切割問題。

     

    昆蟲表達系統

    使用簡單,表達量高,可大規模生產,與原核相比 可對異源蛋白修飾

    外源蛋白表達處于極晚期病毒啟動子的 調控之下,由于病毒感染,細胞開始死亡, 無法進行連續性表達



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